T4 DNA連接酶

英文名稱 ： T4 DNA Ligase 

C A S ： 9015-85-4

分子量 ： 55.3kDa，單體

級 別 ： BR

分子量 ： 55.3kDa，單體

來 源 ： 含有T4噬菌體克隆基因30的大腸桿菌

濃 度 ： 1u/ul(200CEU/ul）

濃 度 ： 5Weiss u/ul(1000CEU/ul）

濃 度 ： 30Weiss u/ul(6000CEU/ul）

活性定義 ： 是指在ATP-PPi交換反應中，37℃、30分鐘內將1nmol [32PPi]轉換為Norit可吸收形式所需的酶量（weiss單位，1個weiss單位相當于約200個粘性末端連接單位。1個粘性末端連接單位：20ul反應體系（50mM Tris-HCL(PH7.5), 10mM DTT, 10mM MgCL2, 1mM ATP, 25ug/ml BSA, 12uM(300ug/ml)的5-DNA末端）中，在16℃、30分鐘內連接50%連接HindIII酶切的Lambda DNA 產物所需的酶量） 

酶活性分析混合物 ： 66mM Tris-HCL(PH7.6), 10mM DTT, 6.6mM MgCL2, 0.066mM ATP, 3.3uM[32PPi]

保存液組分 ： 20mM Tris-HCL(PH7.5), 50mM KC1, 1mM DTT，0.1mM EDTA和50%(v/v)甘油

10×T4 DNA Ligase緩沖液（#B69） ： 400mM Tris-HCL, 100mM MgCL2, 100mM DTT, 5mM ATP(PH7.5,25℃)

抑制劑 ： 當反應體系中NaC1或KC1的濃度超過200 mM時，可強烈抑制T4 DNA Ligase活性

失 活 ： 65℃加熱10分鐘或70℃加熱5分鐘

注 意 ： T4 DNA Ligase與DNA結合會改變條帶的瓊脂糖凝膠電泳遷移率，為避免此現象，電泳前需處理樣本或分子量標準。樣本處理如下：樣本與Fermentas公司6×DNA Loading Dye&SDS溶液（#R1151）混合，75℃加熱5分鐘或65℃加熱10分鐘后冰浴保存；轉化時，連接產物的體積不得超過感受態(tài)細胞體積中的10%；電轉化之前，先用氯仿抽提方法除去連接混合物中的T4 DNA Ligase，然后經乙醇沉淀純化抽提產物

質量控制 ： 測試表明無內切脫氧核糖核酸酶、核糖核酸酶、磷酸酶污染。功能檢測：粘性末端或平末端DNA的連接能力

性 狀 ： 液體。該酶催化雙鏈DNA或RNA中毗鄰的5'磷酸基團和3'-羥基末端之間形成磷酸二酯鍵，還可以修復雙鏈DNA、RNA或DNA/RNA復合體中的單鏈切口，連接DNA的粘性和平末端，但該酶對單鏈核酸無酶活性。該酶需要輔因子ATP

用 途 ： 生化研究。粘性末端或平末端雙鏈DNA的連接；雙鏈寡核苷酸接頭與雙鏈DNA連接；雙鏈DNA、RNA或DNA-RNA復合體中缺口的修復；連接酶介導的RNA檢測；位點特異性突變；擴增片段長度多態(tài)性

保 存 ：  -20°C